三維細胞培養(yǎng)系統(tǒng)是一種通過構(gòu)建三維空間結(jié)構(gòu),模擬細胞在體內(nèi)自然微環(huán)境的體外培養(yǎng)技術(shù),旨在彌補傳統(tǒng)二維細胞培養(yǎng)與動物實驗間的差距,為細胞提供更接近生理狀態(tài)的生長條件。該系統(tǒng)核心在于通過支架材料或無支架技術(shù)構(gòu)建三維結(jié)構(gòu)。支架材料包括天然的膠原、Matrigel及合成材料如聚乳酸、聚苯乙烯等,它們通過調(diào)整孔隙率、力學(xué)性能支持細胞黏附、遷移及功能表達。無支架技術(shù)則包括懸滴法、磁力懸浮等,利用重力或磁場使細胞聚集成球。
三維細胞培養(yǎng)系統(tǒng)有多種類型,常見的包括基于基質(zhì)膠、細胞外基質(zhì)支架、微流控芯片以及旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)系統(tǒng)等,不同系統(tǒng)操作方法有所差異。以下是一些常見三維細胞培養(yǎng)系統(tǒng)的操作指南:
1、基于基質(zhì)膠的三維細胞培養(yǎng)
實驗材料準備:準備基質(zhì)膠、適合細胞生長的培養(yǎng)基、細胞、24孔板或6孔板等實驗耗材。
基質(zhì)膠預(yù)處理:將基質(zhì)膠從-20℃冰箱取出,置于4℃冰箱過夜融化。然后根據(jù)實驗需求,按一定比例與培養(yǎng)基混合稀釋,如1:10。將稀釋后的基質(zhì)膠均勻鋪在培養(yǎng)板孔中,每孔約200-300μL,輕輕晃動培養(yǎng)板使其覆蓋孔底,再將培養(yǎng)板放入37℃、5%CO?培養(yǎng)箱中孵育30-60分鐘,使基質(zhì)膠形成凝膠狀基底。
細胞接種與培養(yǎng):將處于對數(shù)生長期的細胞消化下來,用含血清培養(yǎng)基重懸制成單細胞懸液。使用細胞計數(shù)板計數(shù),根據(jù)實驗設(shè)計調(diào)整細胞密度,一般建議在5×10?-1×10?個/mL。將細胞懸液均勻接種到鋪好基質(zhì)膠的培養(yǎng)孔中,每孔約200-300μL,輕輕晃動培養(yǎng)板使細胞均勻分布,然后放入培養(yǎng)箱培養(yǎng),定期更換培養(yǎng)基。
實驗觀察與分析:通過倒置顯微鏡觀察細胞形態(tài)變化,記錄生長、增殖情況。還可根據(jù)實驗?zāi)康模捎肕TT實驗、劃痕實驗等方法對細胞功能進行檢測,最后對實驗數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。
2、基于細胞外基質(zhì)(ECM)和Transwell系統(tǒng)的三維細胞培養(yǎng)
材料準備:準備Matrigel或其他ECM、預(yù)冷無菌1.5ml離心管、Transwell插入(24孔或12孔,根據(jù)細胞大小選擇孔徑)、適配多孔板、細胞系或類器官模型、培養(yǎng)基、無菌移液器與槍頭、無菌PBS緩沖液等。
ECM預(yù)處理:將ECM懸浮液從冰箱取出保持在冰上,用預(yù)冷移液器移取適量分裝到離心管中。然后將少量ECM加入到Transwell系統(tǒng)的下腔室底部,涂布均勻,放入37℃溫箱孵育30分鐘使其固化。
細胞或類器官懸液制備:胰酶消化細胞后重懸于培養(yǎng)基中,計數(shù)并調(diào)整濃度至1-5×10?cells/ml。若為類器官,先用ECM包被,再輕輕重懸至ECM中并調(diào)整濃度。
Transwell插入預(yù)處理:在每個Transwell插入的內(nèi)腔中加入50-100μl的ECM,確保覆蓋孔膜表面,孵育30分鐘至固化。
細胞或類器官接種:將細胞懸液或類器官懸液滴加到Transwell插入的內(nèi)腔中,然后向上腔室和下腔室加入合適的培養(yǎng)基,注意避免氣泡產(chǎn)生。
培養(yǎng)與維護:將多孔板放入37℃、5%CO?培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每隔2-3天更換上腔室和下腔室的培養(yǎng)基,更換時小心吸除舊培養(yǎng)基,避免擾動細胞或類器官。
分析與記錄:定期用顯微鏡觀察生長情況,記錄圖像和形態(tài)學(xué)變化。還可根據(jù)需求收集細胞或類器官,用于免疫熒光、qPCR等功能分析,同時記錄培養(yǎng)情況和相關(guān)數(shù)據(jù)。
3、微重力3D旋轉(zhuǎn)細胞培養(yǎng)系統(tǒng)
系統(tǒng)安裝:將回旋主機放置在培養(yǎng)箱內(nèi),確保旋轉(zhuǎn)座與培養(yǎng)箱內(nèi)壁至少保留10cm間隙。使用配套扁平電纜連接控制器與主機,注意接口防塵。接入220V交流電。
參數(shù)設(shè)置:通過控制器觸屏選擇重力模式,如微重力(1-4rpm)或超重力(2-5g),還可設(shè)置定時啟動、旋轉(zhuǎn)速度梯度變化等程序。
培養(yǎng)容器準備:若為懸浮細胞培養(yǎng),可使用T25培養(yǎng)瓶或轉(zhuǎn)壁式EP管反應(yīng)器,注意培養(yǎng)基充注量。進行3D球體培養(yǎng)時,優(yōu)化細胞密度,如5×10³-1×10?cells/mL,添加低血清培養(yǎng)基。
系統(tǒng)啟動與監(jiān)測:啟動系統(tǒng)后,通過重力傳感器查看X/Y/Z軸重力數(shù)值,確保實驗條件穩(wěn)定。系統(tǒng)支持37°C、5%CO?培養(yǎng)箱環(huán)境,需提前校準溫濕度參數(shù)。
注意事項:控制器需遠離強磁場環(huán)境,啟動前確認旋轉(zhuǎn)框無阻擋。定期用75%酒精擦拭旋轉(zhuǎn)座表面,防止污染,且定期對重力傳感器校準。
4、基于水凝膠的三維細胞培養(yǎng)(以CulXⅡ型為例)
材料準備:準備CulXⅡ型水凝膠凍干粉、細胞培養(yǎng)基、待培養(yǎng)細胞。
水凝膠制備:根據(jù)需要加入一定量的細胞培養(yǎng)基溶解凍干粉,如加入5ml培養(yǎng)基,使用平頭移液槍頭輕輕吹打至凍干粉充分分散,然后轉(zhuǎn)移至無菌離心管中,渦旋30-60秒至完q溶解。隨后4000轉(zhuǎn)離心5分鐘除去氣泡。
細胞接種:將混合溶液加入沉淀的待培養(yǎng)細胞中重懸細胞,并調(diào)整到所需細胞濃度,對于類器官培養(yǎng),推薦細胞密度為5×10?到1×10?左右。將得到的混合懸液接種到無TC處理的細胞培養(yǎng)板。
培養(yǎng)與換液:將培養(yǎng)板放入37°C二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。換液時可采用回收重懸換液或半量換液兩種方式。回收重懸換液即吸取培養(yǎng)體系,加入緩沖液或培養(yǎng)基稀釋10倍,混勻后1500轉(zhuǎn)離心5分鐘,沉淀回收細胞,再用同樣支架濃度的培養(yǎng)基懸浮細胞后加入培養(yǎng)容器。半量換液則是取出一半體積的培養(yǎng)體系,加入另一培養(yǎng)孔,再用同樣支架濃度的培養(yǎng)液補滿并吹打混勻。
細胞回收:吸取培養(yǎng)體系置于無菌離心管內(nèi),加入緩沖液或培養(yǎng)基稀釋10倍,混勻后1500轉(zhuǎn)離心5分鐘,即可沉淀回收細胞。